Информации

8.17C: Живеалиште на габи, распаѓање и рециклирање - биологија

8.17C: Живеалиште на габи, распаѓање и рециклирање - биологија


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Габите се главните разградувачи на природата; тие разградуваат органски материи кои инаку не би се рециклираат.

Цели на учење

  • Објаснете ги улогите што ги играат габите во распаѓањето и рециклирањето

Клучните точки

  • Помагајќи го опстанокот на видовите од другите кралства преку снабдување со хранливи материи, габите играат главна улога како разградувачи и рециклатори во широкиот спектар на живеалишта во кои постојат.
  • Габите обезбедуваат витална улога во ослободувањето на ретките, но сепак биолошки есенцијални елементи, како што се азот и фосфор, од распаѓање.
  • Нивниот начин на исхрана, кој вклучува варење пред ингестијата, им овозможува на габите да деградираат многу големи и нерастворливи молекули кои инаку би останале заробени во живеалиште.

Клучни услови

  • разградувач: секој организам кој се храни со органски материјал што се распаѓа, особено бактерија или габи
  • егзоензим: секој ензим, генериран од клетка, кој функционира надвор од таа клетка
  • сапроба: организам кој живее од мртов или распаднат органски материјал

Габите и нивните улоги како разградувачи и рециклатори

Габите играат клучна улога во рамнотежата на екосистемите. Тие ги колонизираат повеќето живеалишта на земјата, претпочитајќи темни, влажни услови. Тие можат да напредуваат во навидум непријателски средини, како што е тундра. Сепак, повеќето членови на Кралството габи растат на шумското дно каде што темната и влажна средина е богата со распаѓачки отпадоци од растенија и животни. Во овие средини, габите играат главна улога како разградувачи и рециклатори, што им овозможува на членовите на другите кралства да се снабдуваат со хранливи материи и да живеат.

Прехранбената мрежа би била нецелосна без организми кои ја разградуваат органската материја. Некои елементи, како што се азот и фосфор, се потребни во големи количини од биолошките системи; сепак, ги нема во изобилство во околината. Дејството на габите ги ослободува овие елементи од распаѓање, правејќи ги достапни за другите живи организми. Елементите во трагови присутни во мали количини во многу живеалишта се од суштинско значење за растот, но би останале врзани во гнили органски материи доколку габите и бактериите не ги вратат во животната средина преку нивната метаболичка активност.

Способноста на габите да разградуваат многу големи и нерастворливи молекули се должи на нивниот начин на исхрана. Како што беше видено претходно, варењето му претходи на ингестијата. Габите произведуваат различни егзоензими за варење на хранливите материи. Овие ензими или се ослободуваат во подлогата или остануваат врзани за надворешната страна на клеточниот ѕид на габата. Големите молекули се разложуваат на мали молекули, кои се транспортираат во клетката преку систем на протеински носители вградени во клеточната мембрана. Бидејќи движењето на малите молекули и ензими зависи од присуството на вода, активниот раст зависи од релативно висок процент на влага во околината.

Како сапроби, габите помагаат да се одржи одржлив екосистем за животните и растенијата кои го делат истото живеалиште. Покрај тоа што ја надополнуваат околината со хранливи материи, габите директно комуницираат со други организми на корисен, но понекогаш и штетен начин.


Габите

Габите се една од најголемите групи на живи организми, споредливи по број на видови, разновидност и еколошко значење со животни, растенија, протисти и бактерии. Овој учебник се занимава со сите фундаментални и применети аспекти на микологијата, илустрирани со упатување на добро проучени видови од главните габични групи. Од објавувањето на првото издание на Габите, има многу важни достигнувања во областа на микологијата. Ова второ ажурирано издание е ревидирано и значително проширено, и вклучува примена на методи на молекуларна биологија, особено на ДНК технологијата во микологијата.

Габите се една од најголемите групи на живи организми, споредливи по број на видови, разновидност и еколошко значење со животни, растенија, протисти и бактерии. Овој учебник се занимава со сите фундаментални и применети аспекти на микологијата, илустрирани со упатување на добро проучени видови од главните габични групи. Од објавувањето на првото издание на Габите, има многу важни достигнувања во областа на микологијата. Ова второ ажурирано издание е ревидирано и значително проширено, и вклучува примена на методи на молекуларна биологија, особено на ДНК технологијата во микологијата.


Репродукција

Габите се размножуваат сексуално и/или асексуално. Совршените габи се размножуваат и сексуално и асексуално, додека несовршените габи се размножуваат само асексуално (со митоза).

И во сексуалната и во бесполовата репродукција, габите произведуваат спори кои се распрснуваат од матичниот организам или лебдејќи на ветрот или возејќи се на животно. Спорите на габите се помали и полесни од семето на растенијата. Џиновската пуфбол печурка пука и ослободува трилиони спори. Огромниот број на ослободени спори ја зголемува веројатноста за слетување во средина што ќе го поддржи растот.


8.17C: Живеалиште на габи, распаѓање и рециклирање - биологија

Вовед во биологија на габите
РЕГИСТРИРАЈ

I. Краток вовед во кралските габи

II. Генерализиран животен циклус на габите

III. Интеракции меѓу човекот и габата


КРАТОК ВОВЕД ЗА ГАБИИТЕ НА ЦАРСТВОТО

Кралството габи е ансамбл од различни видови. Сегашните докази сугерираат дека сите габични видови не потекнуваат од еден заеднички предок, следствено, Габите се полифилети (повеќе генеалогии или лоза).


I. ЗАЕДНИЧКИ КАРАКТЕРИСТИКИ НА ГАБИТЕ

1. Хетеротрофија - 'друга храна'. Постојат три главни категории на хетеротрофи, кои вклучуваат сапрофити, симбионти и паразити. Сапрофити (се хранат со мртви ткива или органски отпад) симбиони (взаемно корисен однос помеѓу габа и друг организам) паразити (хранење со живо ткиво на домаќинот). Паразитите кои предизвикуваат болест се нарекуваат патогени. Некои паразити се задолжителни паразити (потребен е жив домаќин за да преживее), додека други се факултативни или незадолжителни паразити (не бараат жив домаќин за да преживеат).

Подолу: Склеротумот на Волфипорија кокос или "tuckahoe" - склеротиумот е скршен на два дела со дијаметар од околу 6 инчи. Откопана од цветна постела во близина на Џонсборо, АР. Фотографија на М. Хус.

3. Честопати габата е скриена од очите. Расте преку својот извор на храна (супстрат), излачува екстрацелуларни дигестивни ензими и ја апсорбира растворената храна.

5. Спори - асексуално (производ на митоза) или сексуално (производ на мејоза) по потекло.

(а) Дозволува габата да се пресели во нов извор на храна.
(б) Отпорна фаза - им овозможува на габата да преживее периоди на неволја.
(в) Средства за воведување нови генетски комбинации во популацијата.

6. Вегетативната фаза на габата е генерално седечка.

7. Присутен клеточен ѕид, составен од целулоза и/или хитин.

8. Складирање на храна - генерално во форма на липиди и гликоген.

9. Еукариоти - присутни вистинско јадро и други органели.

10. Сите габи бараат вода и кислород (без задолжителни анаероби).

11. Габите растат во речиси секое живеалиште што може да се замисли, сè додека има некој вид органска материја, а околината не е премногу екстремна.

12. Разновидна група, бројот на опишани видови е околу 69.000 (вкупно се проценува 1,5 милиони видови).


II. ЖИВОТЕН ЦИКЛУС НА „ТИПИЧНА“ ГАБА

Генерализиран животен циклус на габите

ПОВЕЛЕТЕ НА ДИЈАГРАМОТ ОД БЕЛЕШКИ ЗА ЧАСОТ ИЛИ НА СЛЕДНОТО:

Посетете ги и следните линкови за дополнителни информации:

Некои габи произведуваат спори или други модифицирани клетки за да се репродуцираат сексуално (совршена фаза или телеоморф), други за да се репродуцираат асексуално (несовршена состојба или анаморп), а некои видови се способни за репродукција на двата начини (холоморф).


Симбиоза

Некои видови габи формираат симбиотски врски со растенијата. Микоризните габи се поврзани со корените на растенијата. Овој однос е взаемно корисен бидејќи габите го олеснуваат трансферот на хранливи материи од почвата во корените на растенијата, а за возврат добиваат јаглерод од растението. Јаглеродот се складира од габите во почвата и затоа не се ослободува како јаглерод диоксид. Некогаш се мислеше дека растенијата се единствениот извор на јаглерод за микоризните габи. Сепак, една статија објавена во изданието „Функционална екологија“ од мај 2008 година открива дека микоризните габи можат активно да го разградат органскиот јаглерод и затоа играат поголема улога во загубата и внесувањето на јаглерод од почвата отколку што се мислеше. Лишаите се друг вид на габи кои формираат симбиотска врска, но тие го прават тоа со цијанобактериите. Лишаите обезбедуваат засолниште за бактериите, кои пак создаваат енергија и јаглерод за лишаите преку фотосинтеза.


Зигомикота: Конјугирани габи

Зигомикота, мала група во кралството на габите, може да се репродуцира асексуално или сексуално, во процес наречен конјугација.

Цели на учење

Опишете ја екологијата и репродукцијата на зигомицетите

Клучни производи за носење

Клучните точки

  • Повеќето зигомикоти се сапроби, додека неколку видови се паразити.
  • Зигомикотите обично се размножуваат асексуално со производство на спорангиоспори.
  • Зигомикотите се репродуцираат сексуално кога условите на околината стануваат неповолни.
  • За да се репродуцираат сексуално, два спротивставени соеви на парење мора да се спојат или конјугираат, со што споделуваат генетска содржина и создаваат зигоспори.
  • Добиените диплоидни зигоспори остануваат неактивни и заштитени со дебели облоги додека не се подобрат условите на околината.
  • Кога условите стануваат поволни, зигоспорите се подложени на мејоза за да произведат хаплоидни спори, кои на крајот ќе прераснат во нов организам.

Клучни услови

  • зигомицет: организам од филумот Zygomycota
  • кариогамија: фузија на две јадра во клетка
  • зигоспора: спора формирана со соединување на неколку зооспори
  • конјугација: привремена фузија на организми, особено како дел од сексуалната репродукција

Зигомикота: Конјугирани габи

Зигомицетите се релативно мала група во царството на габите и припаѓаат на Phylum Zygomycota. Тие ја вклучуваат познатата мувла за леб, Rhizopus stolonifer, кој брзо се размножува на површините на лебот, овошјето и зеленчукот. Тие се претежно копнени во живеалиште, живеат во почвата или на растенија и животни. Повеќето видови се сапроби што значи дека живеат од органски материјал што се распаѓа. Некои се паразити на растенија, инсекти и мали животни, додека други формираат симбиотски односи со растенијата. Зигомицетите играат значителна комерцијална улога. Метаболичките производи на други видови на Ризопус се посредници во синтезата на полусинтетички стероидни хормони.

Зигомицетите имаат талус од коеноцитни хифи во кои јадрата се хаплоидни кога организмот е во вегетативна фаза. Габите обично се размножуваат бесполово со производство на спорангиоспори. Црните врвови на мувла за леб, Rhizopus stolonifer, се отечените спорангии преполни со црни спори. Кога спорите ќе слетаат на соодветна подлога, тие ртат и произведуваат нов мицелиум.

Спорангија од мувла за леб: спорангиите растат на крајот од стебленцата, кои се појавуваат како (а) бела матност што се гледа на овој калап за леб, Rhizopus stolonifer. (б) врвовите на мувлата за леб се спорангии кои содржат спори.

Животен циклус на зигомицети: Зигомицетите имаат асексуален и сексуален животен циклус. Во сексуалниот животен циклус, плус и минус типовите на парење се конјугираат за да формираат зигоспорангиум.

Сексуалната репродукција започнува кога условите стануваат неповолни. Два спротивставени соеви на парење (тип + и тип -) мора да бидат во непосредна близина за да се создаде гаметангија (еднина: гаметангиум) од хифите и да се спојат, што доведува до кариогамија. Диплоидните зигоспори во развој имаат дебели облоги кои ги штитат од сушење и други опасности. Тие можат да останат неактивни додека условите на животната средина не станат поволни. Кога зигоспорот ќе никне, тој се подложува на мејоза и произведува хаплоидни спори, кои, пак, ќе прераснат во нов организам. Оваа форма на сексуална репродукција кај габите се нарекува конјугација (иако значително се разликува од конјугацијата кај бактериите и протистите), што го дава името “конјугирани габи”.


Распаѓање и распаѓање

Првото главно се поврзува со работи кои се скапани, имаат лош мирис и генерално се симптоматични за смрт. Последново на сличен начин се смета за непожелно. Примерите вклучуваат градско расипување или, на лично ниво, расипување на забите. Сепак, распаѓањето и распаѓањето се витални процеси во природата. Тие играат суштинска улога во разградувањето на органската материја, рециклирањето и повторното ставање на располагање за користење на новите организми.

Распаѓањето и распаѓањето се јин до јанг на растот. Заедно тие формираат две половини од целината, што е затворен циклус на природните екосистеми. Сè умира, а без распаѓање и распаѓање светот би се преплавил со растителни и животински остатоци. Исто така, ќе доживее пад на новиот раст, поради недостиг на хранливи материи кои би биле затворени и недостапни во мртвите форми.

Што е распаѓање?

Распаѓањето е првата фаза во рециклирањето на хранливите материи што биле користени од организам (растение или животно) за да го изгради своето тело.

Тоа е процес во кој мртвите ткива се распаѓаат и се претвораат во поедноставни органски форми. Овие се извор на храна за многу од видовите во основата на екосистемите. Видовите кои го спроведуваат процесот на распаѓање се познати како детритивори. Детритивор буквално значи „хранење на мртви или распаднати органски материи“. Многу од овие распаѓачки видови функционираат во тандем или паралелно еден со друг. Секој од нив е одговорен за одреден дел од процесот на распаѓање. Збирно тие се познати како заедница на детритивири.

Неопеаните херои на природата за рециклирање

Во процесот на распаѓање учествуваат широк спектар на организми. Повеќето од нив се незабележителни и негламурозни. Од конвенционална човечка перспектива, тие се дури и непожелни. Заедницата на детритивори вклучува инсекти како што се бубачки и нивните ларви, како и муви и отрепки (ларви на муви). Вклучува и шумски глувчиња, габи, мувла на лигите, бактерии, голтки и полжави, милипеди, пролетни опашки и дождовни црви. Повеќето од нив работат надвор од видното поле, а нивната рачна работа не е веднаш очигледна, но тие се неопеаните херои на рециклирањето во шумата. Речиси сите од нив се мали, а нивната функција се случува постепено во повеќето случаи, со месеци или години. Но, заедно тие ги претвораат мртвите растенија и животни во форми кои се употребливи или сами или други организми.

Распаѓање во растенијата

Примарните разградувачи на повеќето мртви растителни материјали се габите. Мртвите лисја паѓаат од дрвјата, а тревните растенија паѓаат на земја откако ќе произведат семиња. Тие формираат слој ѓубре на површината на почвата. Слојот на ѓубре може да биде доста значителен по волумен. Отпадот на ѓубре кај шкотскиот бор е околу 1-1,5 тони по хектар годишно, додека во умерените листопадни шуми е над 3 тони по хектар годишно. Отпадокот брзо е навлезен од хифи на габи. Хифите се бели нишки кои се главното тело на габата. (Пачурките што се појавуваат на шумското дно се само плодни тела на габата.) Хифите црпат храна од ѓубрето. Ова им овозможува на габите да растат и да се шират, притоа да ја разградуваат структурата на мртвиот растителен материјал. Бактериите исто така играат улога во овој процес, како и различните без'рбетници, вклучително и голтки, полжави и пружини. Како што распаѓањето станува понапредно, дождовните црви ја започнуваат својата работа.

Овој процес на распаѓање обично е без мирис. Тој е аеробен, што значи дека се одвива во присуство на воздух (особено кислород). На шумското дно е распослано и во просторот и во времето. Кога луѓето прават купишта компост во својата градина, тие го користат истиот процес. Се концентрира и забрзува со натрупување на мртвиот материјал на куп, а топлината што се создава го забрзува процесот на распаѓање.

Габите кои се хранат со мртви растителни материјали се нарекуваат сапротрофни габи. Вообичаени примери вклучуваат габа од падобран од коњско влакно, која може да се види како расте од мртви стебла на трева, лисја или борови иглички. Друга е сулфурната габа, која плодови на трупци кои се во напредна фаза на распаѓање.

Во шумата, стапката на распаѓање зависи од тоа што е мртвиот растителен материјал. Лисјата на листопадните дрвја и стеблата и зеленилото на недрвенестите растенија обично брзо се распаѓаат. Тие обично ги нема во рок од една година по паѓањето на шумското дно. За некои растителни материјали, како што се влакнестите мртви реси од бракен, потребно е подолго време. Но, дури и овие сепак ќе бидат распаднати во рок од три години. Иглите на четинари, како што е шкотскиот бор, се многу поцврсти. Може да бидат потребни и до седум години за да бидат целосно распаднати и рециклирани. Стапката на распаѓање се одредува и од тоа колку е материјалот влажен, и генерално колку е повлажен толку побрзо се распаѓа. Во суви периоди или суви клими, органската материја се исушува. Многу детритивори, како што се габите и голтките, се неактивни, така што процесот на распаѓање станува продолжен.

Распаѓање на дрвенест материјал – настанува гниење

За разлика од помеките ткива на тревните растенија, влакната на дрвјата и другите дрвенести растенија се многу поцврсти и им треба подолго време за да се распаднат. Габите сè уште се, во најголем дел, првите агенси на распаѓање, а има многу видови кои растат во мртво дрво. Вообичаените имиња на видовите како што се габата на влажно гниење и габата на гниење желе укажуваат на нивната улога во помагањето на дрвото да се распаѓа. Растот на габичните хифи во дрвото им помага на другите детритивори, како што се бактериите и ларвите на бубачки, да добијат пристап. Габите се хранат со целулоза и лигнин, претворајќи ги во нивните помеки ткива. Тие за возврат почнуваат да се распаѓаат кога габичните плодни тела умираат. Многу видови на лигите мувла растат и во мртвите трупци и играат улога во распаѓањето. Како и габите, тие генерално се видливи само кога се подготвени за репродукција и кога се појавуваат нивните плодни тела.

Некои разградувачи се високо специјализирани. На пример, габата за уши расте од распаднати шишарки кои се делумно или целосно закопани во почвата. Друга габа позната како Cyclaneusma minus расте на паднатите игли од шкотскиот бор.

Како што дрвото станува попробиено и отворено, на пример, низ галериите произведени од ларвите на бубачки, тоа станува повлажно. Да се ​​биде влажен ја олеснува следната фаза на распаѓање. Без'рбетниците, како што се шумите и милипедите се хранат со дрвото што се распаѓа. Ќе пристигнат и предатори и паразити, како што се разбојнички муви и ихнеумони оси, за да се хранат со бубачки и други безрбетници. За дрвјата како што е брезата, дрвото станува многу влажно и скапано, и лесно се распаѓа по неколку години. Во оваа фаза често се гледаат дождовни црви и пружини, кога дрвото што се распаѓа наскоро ќе се асимилира во почвата. Тие можат да достигнат голема густина - може да има 1 тон или дождовни црви во еден хектар широколисна европска шума! Сепак, дрвото од борови има висока содржина на смола. Ова го прави многу поотпорен на распаѓање и може да бидат потребни неколку децении за целосно да се распадне трупецот од бор.

Тоа е свет на габи што јаде габа

Повеќето габи се со меко тело и имаат висока содржина на вода. Ова значи дека тие често се распаѓаат и исчезнуваат во рок од неколку дена или недели од плодот. Поцврстите, подрвенести габи, како што е габата на габата, може да опстојат неколку години. И покрај тоа, тие често имаат специјализирани разградувачи кои работат на нив. Тиндер габа, на пример, е домаќин на ларвите на црната габа и чаталестата габа буба. Тие се хранат со габичното плодно тело, помагајќи да се разбие неговата дрвенеста структура

Друга габа заграда која расте на мртви бреза е полипорот од бреза. Оваа габа сама по себе е колонизирана од габата на окер, која се храни и ги разградува заградите на полипорот. Габата на мувлата е уште еден вид што расте на габи, во овој случај членови на групата болети. (Болетовите имаат пори на долната страна на нивните капачиња и вклучуваат видови за јадење, како што е чеп.) Свилената габа на свинче и прашкастата габа на габите на капачињата на кршливите габи. Тие го забрзуваат процесот на распаѓање и распаѓање во нив. Калапи од лигите, иако не се габи, донекаде личат на габи кога се во фаза на плодност од нивниот животен циклус. Плодните тела на видот наречен Trichia decipiens се подложни на габична мувла која расте на нив. Ова за возврат го забрзува нивното распаѓање.

Распаѓање во животинското царство

Габите играат клучна улога во разградувањето на растенијата, но ова не е случај кога станува збор за мртви животински материи. Огромното мнозинство од разградувачите во овој случај се други животни и бактерии. Разградувачите на животните вклучуваат чистачи и хранење мрши. Тие трошат делови од животински труп, користејќи го како извор на енергија. Тие исто така го претвораат во ткивата на сопствените тела и изметот што го излачуваат. Овие животни се движат од лисици и јазовци до птици како што е врана со качулка. Тие, исто така, вклучуваат безрбетници како што се мушички од мрши, муви и разни бубачки. Нивниот измет за возврат го јадат други организми, особено бубачки од измет и бубачки закопани. Некои габи, вклучувајќи го и тркалезниот измет, растат од измет, помагајќи да се разградат.

Не сите животински трупови веднаш се консумираат од големи чистачи. Во овие случаи постојат пет главни фази во процесот на распаѓање. Првиот од нив е кога трупот е сè уште свеж. Во оваа фаза пристигнуваат мрши и мушички кои ги несат своите јајца околу отворите, како што се носот, устата и ушите. Во втората фаза, дејството на бактериите во трупот предизвикува гниење. Овие бактерии произведуваат гасови поради кои трупот отекува. Ова е анаеробно распаѓање, или распаѓање во отсуство на воздух. Се карактеризира со својот лош мирис, за разлика од безмирисната природа на аеробното распаѓање.

Следната фаза започнува кога кожата на трупот е пукната. Гасовите излегуваат и трупот повторно се издува. Во оваа фаза на распаѓање, ларвите или отрепките на мувите се размножуваат и консумираат голем дел од мекото ткиво. Пристигнуваат и предатори како оси, мравки и бубачки, за да се хранат со ларвите на мувите. Во следната фаза остануваат само 'рскавицата, кожата и коските. Во овој момент различни групи на муви и бубачки, заедно со нивните паразити, го преземаат процесот на распаѓање. Конечно, остануваат само коските и влакната и тие можат да опстојат неколку години или повеќе. На крајот дури и овие се консумираат - на пример, глувците и волчињата ќе ги гризат старите коски за да го добијат калциумот што го содржат. Молците за облека помагаат во распаѓање на косата или пердувите. Прогресијата низ овие фази зависи до одреден степен од годишното време кога настапува смртта. Но, обично се потребни неколку месеци од почеток до крај.

Еден пример на габа која помага во разградување на животинската материја е црвената габа од габичка од гасеница. Овој вид расте од живата кукличка или ларва на молец или пеперутка. Телото на својот домаќин го претвора во плодно тело, кое е во форма на палка и портокалово, со мозолична површина.

Распаѓањето го храни новиот раст

Распаѓањето и распаѓањето може да изгледаат како непријатни процеси од нашата човечка перспектива. Сепак, тие се од витално значење за функционирањето на екосистемите. Исто како компостот во градината, тие обезбедуваат основни хранливи материи за растот на нови организми. Тие се клучен аспект на цикличните процеси кои го одржуваат целиот живот на Земјата. Обновеното разбирање на нивната важност ќе им помогне на луѓето да ги заштитат и одржуваат екосистемите. Оваа благодарност може дури и да обезбеди инспирација за алтернативи на неодржливиот неограничен модел на раст што ја движи човечката култура денес.


Материјали и методи

Опис на локацијата

Студијата беше спроведена во Рајхрамингер Хинтергебирге, планински венец лоциран во австриските варовнички Алпи (47°49′08″N, 14°23′34″E). Во шумскиот насад доминира европска бука (Fagus sylvatica L.) со старост на штандот од в. 146 год. во 2015 година. Локалитетот е изложен на југоисток со наклон од 35° на надморска височина од 1000 до 1100 m надморска височина (н.в.н.) (Придружни информации Сл. S1). Матичната основа е варовник, доминантни почвени типови се Ренџичкиот лептосол и хромниот камбизол. Просечната годишна температура на воздухот и врнежите се 7,8°C и 1645 mm, соодветно (Коблер et al., 2015 година). Шеснаесет парцели (в. 25 m × 25 m) беа избрани долж природниот градиент на плодност (продолжение в. 700 m Сл. S1), се карактеризира со промена на топографијата, типот и длабочината на почвата и хидрологијата. Градиентот на плодноста ја следеше линијата на контурата, со помалку плодни парцели со конвексна топографија, поплитки, камени почви и поплодни парцели со подлабоки, глинести почви и конкавна топографија (сл. 1а).

Инвентар на штандови, истражување на вегетацијата, микроклиматски мерења и собирање ѓубре

Во мај 2015 година, дијаметарот на висината на градите и висината на дрвјата беа измерени на секоја парцела беа применети алометриски функции за да се пресмета надземната дрвна биомаса на дрвјата (Wutzler et al., 2008). За секоја парцела, идентитетот и доминацијата на растителните видови во билниот слој беше утврдена на четири подпарцели. Под парцелите беа дефинирани како триаголни површини помеѓу по три буки. На растителните видови им беа доделени вредностите на индикаторот Еленберг (Табела S1) и беа пресметани средните пондерирани вредности на индикаторот по парцела (Еленберг et al., 1992). Мерењата на температурата на почвата (длабочина од 5 см) и влагата (длабочина од 0-7 см) беа спроведени шест пати помеѓу мај и август 2015 година со помош на рачен термометар и мерач на влага TDR (Spectrum Technologies, Aurora, IL, САД) според парцелата. од шесте мерни кампањи беа искористени за понатамошни анализи. Вкупно, 20 стапици за отпадоци (г: 52 см, ч: 70 cm) беа поставени долж градиентот во септември 2015 година. Стапици беа поставени во непосредна близина на утврдените парцели (сл. S1). До октомври 2016 година, стапиците за отпадоци се празнаа редовно, а собраниот отпад се сушеше (105°C) и тежеше (± 0,01 g) падот на ѓубрето последователно беше сумиран за секоја стапица и е даден во g m −2 год −1. Во зависност од локацијата долж градиентот, замките за отпадоци беа групирани во три нивоа на плодност за понатамошни анализи (ниска, средна, висока плодност Сл. S1).

Земање и преработка на органски слој и минерална почва

Во јуни 2015 година беа земени примероци од органски слој на 12 избрани парцели по градиентот (сл. S1, правоаголници со точки со точки). Отпадоци (ОЛФ) и хумусните хоризонти (ОХ, доколку е присутно) беа земени одделно примероци со голем јадро (г: 19 см). Беа земени четири реплики по парцела. Примероците беа здружени по парцела и хоризонт, а корените и камењата беа отстранети. Вкупната маса на примероците од ѓубре и хумус беше одредена со мерење (± 0,01 g) и последователно множење со факторите на конверзија на тежина утврдени за потпримероци (105°C, 48 часа).

Во август 2015 година беа земени примероци од минерална почва на секоја парцела долж градиентот (сл. S1, правоаголници со полна линија). Земени се примероци од минералната горната почва (0-10 cm, в. 1 l волумен на почва) со помош на лопата. Беа земени четири реплики по парцела. Поради високата содржина на камења (до 80% од волуменот на почвата), земање мостри подлабоко од в. 10 cm беше тешко изводливо на многу локации. Површината на почвата беше, сепак, најголемиот базен за органски C и N (види Методи S1 Табела S2). Примероците од почвата веднаш беа просеани (2 mm) на терен. За анализа на габичната заедница, 0,5 g хомогенизирана минерална почва беше измерена во 1,5 ml раствор за зачувување на почвата LifeGuard (MO BIO, Carlsbad, CA, USA). Минералната почва за ензимски анализи беше замрзната на -20°C истиот ден, а почвата за други анализи се чуваше на 4°C до понатамошна обработка.

За да се одреди густината на минералната почва, содржината на камења и биомасата на коренот, три мали почвени јами (в. 15 cm × 15 cm површина) беа ископани до 10 cm длабочина на минерална почва по парцела. По отстранувањето на органскиот слој, земена е мостра од минералната почва. Во лабораторија, примероците беа измерени корени и камења беа бере по рака и исплакнете чисто. фини корени (г ≤ 2 mm), груби корени (г > 2 mm), камења и подпримероци (в. 10 g) просеана (2 mm) почва беа исушени (105°C, 24 часа) и измерени (± 0,0001 g). Волуменот на биомаса на коренот (g m −2) и содржината на каменот (vol%) беа одредени со користење на сува тежина и специфична густина. Сувата маса на фината почва (g m −2) и густината на ситната почва (g cm −3) беа последователно пресметани за секоја парцела. Грубите корени не беа користени за статистичка анализа.

Анализи на органски слоеви и минерални почви

Вкупната концентрација на C и N (%) на примероци од органски слој и минерална почва беше анализирана на подмостра од 300 mg со помош на TruSpec CHN анализатор (Leco, St Joseph, MI, USA), потпримероците беа исушени (105 °C, 24 часа) и мелење пред анализа (Pulverisette 5 Fritsch, Германија). Залихите на јаглерод и N на органскиот слој последователно беа пресметани со множење на вкупната сува маса на хоризонтот со концентрациите на C и N. Концентрацијата на неоргански C на потпримероци од минерална почва беше одредена со помош на методот на Шајблер (ÖNORM L 1084, 1999). Концентрацијата на C на органската почва на слоевите на минералната почва беше пресметана како разлика во концентрациите на неоргански и вкупен C. Залихите на органски C и N од минерална почва (0-10 cm g m-2) беа пресметани од соодветните органски концентрации на C и N помножени со сувата тежина на минералната почва.

Просечното време на престој на органскиот слој беше пресметано по парцела (Бергер et al., 2009 година). За тоа, сувата маса на органскиот слој беше поделена со просечната годишна стапка на паѓање на ѓубрето на најблиските замки (сл. S1). Овој пристап претпоставува дека влезот на коренскиот отпад во органскиот слој е занемарлив.

Почва CO2 истекот од микробиското дишење беше измерен на свежа минерална почва (еквивалентно на в. 25 g сушена почва во рерна) во рок од неколку дена по земање мостри. За мерење на дишењето, почвата се просеа до 2 mm и се наполни во челични цилиндри од 200 cm 3 со волуменска густина на теренот (Рајхштајн et al., 2000 Шиндлбахер et al., 2015 година). По в. 3 д рамнотежа на 4°C, цилиндрите беа ставени во пластични садови од 2 литри поврзани со единица за анализатор на инфрацрвени гасови (SBA-4 PP Systems International, Amesbury, MA, САД). Накратко, микробното дишење на секој примерок беше одредено како ΔCO2 во затворени садови за Δ6 мин. Микробиското дишење беше одредено на стандардизирана температура од 15°C. Стапките на дишење се изразени во mg C g −1 Cd −1 и во mg C m −2 d −1 користејќи вкупна сува маса на минерална почва за конверзија. Детали за системот за мерење и протоколот може да се најдат на друго место (Mayer et al., 2017а, б).

Потенцијалните активности на хидролитичките ензими на почвата беа измерени флуорометриски според Маркс et al. (2001) и германски et al. (2011). Накратко, 0,5 g минерална почва беше суспендирана во 50 ml од 100 mM Tris пуфер, pH 7,5 и хомогенизирана 1 мин во бања за сончање (48 kHz, 50 W). Делови од 200 μl беа пипетирани под постојано мешање (на магнетна плоча) во црни микроплочи од 96 бунари, со четири технички реплики за секој примерок. Оптимални концентрации на супстратот и време на инкубација за леуцин аминопептидаза (1 mM), Н-ацетил-β-d-глукозаминидаза (1 mM), β-глукозидаза (0,5 mM), кисела фосфатаза (2 mM), β-ксилозидаза (1 mM) и целобиохидролаза (0,3 mM) беа однапред евалуирани за да се избегне потенцијална инхибиција на супстратот . Потоа, 50 µl супстрат (растворен во дејонизирана вода) се додадени во секоја бунар и плочата се протресува хоризонтално 30 секунди за мешање. Микроплочките се инкубираат на 20°C во темница 120 мин (кисела фосфатаза) или 180 мин (за сите други ензими). Флуоресценцијата беше измерена со помош на читач со повеќе плочи со побудување од 365 nm и емисија од 450 nm, при 20 и 100 трепкања (EnSpire Perkin Elmer, Waltham, MA, USA). Стандардните криви беа подготвени во пуфер раствор користејќи четири стандардни раствори со концентрации помеѓу 10 μM и 250 μM, за супстрати базирани на 4-метилумбелиферон (сите ензими освен леуцин аминопептидаза) и две стандардни криви со концентрации од 20 μM и 50 μM, за супстрати базирани на 7-амино-4-метилкумарин (леуцин аминопептидаза). Соодветните множества на стандардни кривини беа подготвени во кашеста маса за да се земе предвид гаснењето. За мерење на потенцијалната активност на фенол оксидаза, како супстрат се користеше 3,4-дихидрокси-l-фенилаланин (DOPA). Овде, 900 µl суспензија од почва (или 900 µl пуфер раствор за празни бунари) беа измешани со еквивалентна количина од 10 mM раствор DOPA (подготвен во 100 mM TRIS пуфер), протресен хоризонтално 10 мин и центрифугиран на в. 1500 е сила за 5 мин. Then, 250 µl of this suspension was transferred into a clear 96-well plate with three-fold repetition. Absorption was measured immediately (time 0), and after в. 6 h of incubation in the dark (20°C), at 450 nm using a multiplate reader (as above). Potential phenol oxidase activity was calculated as the difference between absorption at time 0 and after incubation. Potential activities of hydrolytic and oxidative enzymes are expressed in mmol or mol g −1 Ch −1 and in mmol or mol m −2 h −1 using total dry mass of mineral soil for conversion.

Soil fungal community analysis

For DNA isolation from mineral soil samples, half of the suspension in LifeGuard Soil Preservation Solution (see above) was transferred to the wells of a Bead Plate from the PowerSoil-htp 96 Well Soil DNA Isolation Kit (Mo Bio, Carlsbad, CA, USA). After centrifugation and removal of the supernatant, the combined vacuum and centrifugation protocol of the manufacturer was followed. Cell lysis was carried out in a FastPrep-96 bead beater (MP Biomedicals, Santa Ana, CA, USA) twice at 6 m s −1 for 45 s with a 1 min break before the second lysis. To increase recovery of DNA from soil (Feinstein et al., 2009 ), new Bead Solution and Solution C1 were added to the soil pellet after the first extraction and the full extraction was repeated. Library preparation and Illumina MiSeq sequencing of fungal amplicons was conducted as described in Keiblinger et al. ( 2018 ). In brief, the fungal ITS2 region was amplified with the primer pair of ITS3Mix_NeXTf and ITS4Mix_NeXTr. Forward and reverse primers were equimolar mixes of modified versions of original primers published by White et al. ( 1990 ) as suggested by Tedersoo et al. (2015). Nextera XT adapters were attached to the 5′-end of the fungal-specific primers for subsequent indexing and high-throughput sequencing. Illumina MiSeq PE250 sequencing was performed at the NGS Unit of the Vienna Biocenter Core Facility GmbH (Vienna, Austria). Quantification of total fungal DNA was carried out using qPCR with FungiQuant primers targeting the SSU region (Liu et al., 2012 ) and following the protocol described in Unterwurzacher et al. ( 2018 ) with a modified assay volume of 10 µl. The qPCR standard was prepared by mixing equal amounts of genomic DNAs from Penicillium canescens NG_p02, Trichoderma harzianum NG_p29, and Tritirachium сп. gab0401. Total fungal DNA is expressed in µg DNA m −2 using total dry mass of mineral soil for conversion. Primers for sequencing and qPCR targeted different regions (ITS2 and SSU, respectively) in the rRNA gene cluster due to different requirements for specificity and sequence variability. Both regions are present in the same copy number per genome.

Sequence data analysis followed the steps outlined in Unterwurzacher et al. ( 2018 ) and Gorfer et al. ( 2021 ). Usearch scripts were used for chimaera detection and filtering of underrepresented sequences (< 10 reads in the full dataset). Vsearch (Rognes et al., 2016 ) was used for clustering and counting sequences per cluster given a 97% sequence similarity, which compensated for an artificial inflation of operational taxonomic units (OTU) numbers. Taxonomic affiliation of OTUs was carried out with the Utax script against the UNITE database (Kõljalg et al., 2013 ), while manual editing of the data increased phylogenetic accuracy (Hofstetter et al., 2019 година). When no accurate classification at the genus level was possible, the closest taxonomic level, to which a clear affiliation was possible, was used instead. Nonfungal sequences were excluded from further analyses. Fungal OTUs were affiliated to ecological lifestyles/guilds (Deltedesco et al., 2020 Gorfer et al., 2021 ) the lifestyles/guilds are: ectomycorrhizal fungi, other symbiotic fungi (e.g. species with unspecific mycorrhizal lifestyle or forming arbuscular mycorrhizas), saprotrophic ascomycetes, saprotrophic basidiomycetes, other saprotrophic fungi (e.g. Mortierella, Rhizophydiales, Мукор), pathogenic fungi, and those of unknown lifestyle (Table S3). For statistical community analysis (see below), fungal OTUs were taxonomically grouped at genus level or closest higher taxonomic level (e.g. family). Ratios between relative abundances of ectomycorrhizal fungi and saprotrophic fungal guilds were calculated for each plot.

Статистичка анализа

All variables were averaged per plot before analyses. To assess soil fertility continuously, vascular plant’s Ellenberg indicator values for nutrients, soil reaction (a proxy for soil pH), and moisture were used. In brief, the indicator variables were analysed by means of principal component analysis (PCA Fig. S2). The scores of the first PCA axis, integrating the availability of soil resources to plants, were used to represent a ‘fertility index’. See Methods S2 for a detailed description of the calculated fertility index.

Variables were related to each other using linear regression models. Models were extended by a variogram correlation structure when residuals were spatially autocorrelated (Zuur et al., 2009 ). Differences in annual litter fall among fertility levels (Fig. S1) was tested by means of analysis of variance (ANOVA) to meet the criteria of ANOVA, data were log transformed before analysis.

Detrended correspondence analysis (DCA) was used to determine patterns among the fungal community in mineral soil (Paliy & Shankar, 2016 ). To study the effect of fertility on the fungal community, the fertility index was correlated to the DCA scores. To explore the role of fungi in SOM decomposition in greater detail, potential soil enzyme activities, microbial respiration, and mineral soil C : N ratios were additionally correlated to DCA scores. Canonical correspondence analysis (CCA) was used to investigate how much of the total variation was explained by the individual variables. The significances of the variables were tested by means of Monte Carlo permutation tests (n = 999). DCA and CCA were based on relative abundance of 352 taxonomic groups that occurred on ≥ 3 plots.

Level of significance was set at П < 0,05. Statistical analysis and plotting was conducted in R (R Core Team, 2017 ) using packages nlme (Pinheiro et al., 2014 ) and vegan (Oksanen et al., 2016 ).


8.17C: Fungi Habitat, Decomposition, and Recycling - Biology

Introduction to Biology of Fungi
OUTLINE

I. Brief Introduction to the Kingdom Fungi

II. Generalized Life Cycle of Fungi

III. Human-fungus Interactions


BRIEF INTRODUCTION TO THE KINGDOM FUNGI

The Kingdom Fungi is an ensemble of diverse species. Current evidence suggests that all fungal species are not derived from a single common ancestor, consequently the Fungi are polyphyletic (multiple genealogies or lineages).


I. COMMON CHARACTERISTICS OF FUNGI

1. Heterotrophy - 'other food'. There are three major categories of heterotrophs, which include the saprophytes, symbionts, and parasites. Saprophytes (feed on dead tissues or organic waste) symbionts (mutually beneficial relationship between a fungus and another organism) parasites (feeding on living tissue of a host). arasites that cause disease are called pathogens. Some parasites are obligate parasites (require a living host to survive), while others are facultative or nonobligate parasites (do not require a living host in order to survive).

Below: The sclerotium of Wolfiporia cocos or "tuckahoe" - the sclerotium is broken in two parts with a diameter of about 6 inches. Dug up from a flower bed near Jonesboro, AR. Photograph by M. Huss.

3. Fungus is often hidden from view. It grows through its food source (substratum), excretes extracellular digestive enzymes, and absorbs dissolved food.

4. Indeterminate clonal growth.

5. Spores - asexual (product of mitosis) or sexual (product of meiosis) in origin.

(a) Allows the fungus to move to new food source.
(b) Resistant stage - allows fungus to survive periods of adversity.
(c) Means of introducing new genetic combinations into a population.

6. Vegetative phase of fungus is generally sedentary.

7. Cell wall present, composed of cellulose and/or chitin.

8. Food storage - generally in the form of lipids and glycogen.

9. Eukaryotes - true nucleus and other organelles present.

10. All fungi require water and oxygen (no obligate anaerobes).

11. Fungi grow in almost every habitat imaginable, as long as there is some type of organic matter present and the environment is not too extreme.

12. Diverse group, number of described species is about 69,000 (estimated 1.5 million species total).


II. LIFE CYCLE OF A 'TYPICAL' FUNGUS

Generalized Life Cycle of Fungi

REFER TO DIAGRAM FROM CLASS NOTES or Figure 1-9 in the textbook.

Some fungi produce spores or other modified cells to reproduce sexually (perfect stage or the teleomorph), others to reproduce asexually (imperfect state or the anamorp), and some species are capable of reproducing both ways (holomorph).


Allen, M.F. 1991. The ecology of mycorrhizae. Cambridge, U.K.: Cambridge University Press 184 p.

Amaranthus, M.P., D.S. Parrish, and D.A. Perry. 1989. Decaying logs as moisture reservoirs after drought and wildfire. Пп. 191-194 in E. Alexander (editor). Stewardship of soil, air and water resources. Proc. Watershed 89. USDA Forest Service R10-MB-77. USDA Forest Service Alaska Region, Juneau, AK.

Amaranthus, M., J.M. Trappe, L. Bednar, D. Arthur. 1994. Hypogeous fungal production in mature Douglas-fir forest fragments and surrounding plantations and its relation to coarse woody debris and animal mycophagy. Canadian Journal of Botany 24:2157-2165.

Amaranthus, M. and D. Pilz. 1996. Productivity and sustainable harvest of wild mushrooms. Пп. 42-61 in D. Pilz and R. Molina, eds. Managing forest ecosystems to conserve fungus diversity and sustain wild mushroom harvests. ген. Rep. PNW-GTR-371. Portland, OR: USDA Forest Service, Pacific Northwest Research Station. 104 p.

Bader, P., S. Jansson, and B.G. Jonsson. 1995. Wood-inhabiting fungi and substratum decline in selectively logged boreal spruce forest. Biological Conservation 72:355-362.

Berg, A., B. Ehnström, L. Gustafsson, T. Hallingbäck, M. Jonsell, J. Weslien. 1994. Threatened plant, animal, and fungus species in Swedish forests: distribution and habitat associations. Conservation Biology 8:718-731.

Cázares, E., D.L. Luoma, J. Eberhart, M.P. Amaranthus, C. Cray, J. Dudd and M. McArthur. 1998. Hypogeous fungal diversity and biomass following salvage logging in Mt. Hood National Forest, Oregon, USA. Pp 39-40 in Programme and Abstracts of the Second International Conference of Mycorrhiza, Uppsala, Sweden.

Christensen, M. 1989. A view of fungal ecology. Mycologia 81:1-19.

Clarkson, D.A. and L. Scott Mills. 1994. Hypogeous sporocarps in forest remnants and clearcuts in southwest Oregon. Northwest Science 68(4):259-26.

Colgan III, W., A.B. Carey, J.M. Trappe, R. Molina and D. Thysell. 1999. Diversity and productivity of hypogeous fungal sporocarps in a variably thinned Douglas-fir forest. Can. J. For. Рез. 29:1259-1268.

Crites, S. and M.R.T. Дејл. 1998. Diversity and abundance of bryophytes, lichens, and fungi in relation to woody substrate and successional stage in aspen mixedwood boreal forests. Can. J. Bot. 76:641-651.

Dahlberg, A., and J. Stenlid. 1995. Spatiotemporal patterns in ectomycorrhizal populations. Canadian Journal of Botany 73 (Suppl. 1):1222-1230.

De la Bastide, P. Y., B. R. Kropp, and Y. Piche. 1994. Spatial distribution and temporal persistence of discrete genotypes of the ectomycorrhizal fungus Лакарија двобојна (Maire) Orton. New Phytologist 127:547-556.

Durall, D.M., M.D. Jones, E.F. Wright, P. Kroeger and K.D. Coates. 1999. Species richness of ectomycorrhizal fungi in cutblocks of different sizes in the Interior Cedar-Hemlock forests of northwestern British Columbia: sporocarps and ectomycorrhizae. Can. J. For. Рез. 29:1322-1332.

Fogel, R. and J.M. Trappe. 1978. Fungus consumption (mycophagy) by small animals. Northwest Sci. 52:1-30.

Harmon, M.E., J. Sexton, B.A. Caldwell, and S.E. Carpenter. 1994. Fungal sporocarp mediated losses of Ca, Fe, K, Mg, Mn, N, P, and Zn from conifer logs in the early stages of decomposition. Can. J. For. Рез. 24:1883-1893.

Harmon, M.E. and J. Sexton. 1995. Water balance of conifer logs in early stages of decomposition. Plant and Soil 172:141-152.

Harvey, A.E., M.F. Jurgensen and M.J. Larsen. 1978. Seasonal distribution of ectomycorrhizae in a mature Douglas-fir/larch forest soil in western Montana. Forest Science 24:203-208.

Harvey, A.E., M.F. Jurgensen, and M.J. Larsen. 1981. Organic reserves: importance to ectomycorrhizae in forest soils of western Montana. Forest Science 27:442-445.

Harvey, A.E., M.J. Larsen, and M.F. Jurgensen. 1976. Distribution of ectomycorrhizae in a mature Douglas-fir/larch forest soil in western Montana. Forest Science 22:393-398.

Hennon, P.E. 1995. Are heart rot fungi major factors of disturbance in gap-dynamic forests? Northwest Science 69:284-292.

Høiland, K. and E. Bendiksen. 1996. Biodiversity of wood-inhabiting fungi in a boreal coniferous forest in Sør-Trøndelag County, Central Norway. Nordic Journal of Botany 16:643-659.

Holah, J.C., M.V. Wilson and E.M. Hansen. 1993. Effects of a native forest pathogen, Phellinus weirii, on Douglas-fir forest composition in western Oregon. Canadian Journal of Forest Research 23:2473-2480.

Ingham, E.R. and R. Molina. 1991. Interactions among mycorrhizal fungi, rhizosphere organisms, and plants. Pp 169-197 In: Microbial Mediation of Plant-Herbivore Interactions, P. Barbosa, V.A. Krischik, and C.G. Jones, eds., John Wiley & Sons.

Jonsson, L., A. Dahlberg, M-C. Wilsson, O. Zackrisson, and O. Kårén. 1999. Ectomycorrhizal fungal communities in late-successional Swedish boreal forests, and their composition following wildfire. Molecular Ecology 8:205-215.

Kropp, B.R. 1982. Rotten wood as mycorrhizal inoculum for containerized western hemlock. Canadian Journal of Forest Research 12:428-431.

Kruys, N., C. Fries, B.G. Jonsson, T. Lämås, and G. Ståhl. 1999. Wood-inhabiting cryptogams on dead Norway spruce (Picea abies) trees in managed Swedish boreal forests. Can. J. For. Рез. 29:178-186.

Kruys, N. and B.G. Jonsson. 1999. Fine woody debris is important for species richness on logs in managed boreal spruce forests of northern Sweden. Can. J. For. Рез. 29:1295-1299.

Maser, C., R.G. Anderson, K. Cromack, Jr., J.T. Williams and R.E. Martin. 1979. Dead and down woody material. In: Wildlife habitats in manages forests: th eBlue Mountains of Oregon and Washington. J.W. Thomas, Ed., USDA For. Serv. Agric. Handb. 553. pp 78-95.

Maser, C., J.M. Trappe, R.A. Nussbaum. 1978. Fungal-small mammal interrelationships with emphasis on Oregon coniferous forests. Ecology 59:799-809.

Molina, R., and J. M. Trappe. 1982. Patterns of ectomycorrhizal host specificity and potential among Pacific Northwest conifers and fungi. Forest Science 28:423-458.

Molina, R., T. O&rsquoDell, D. Luoma, M. Amaranthus, M. Castellano, and K. Russell. 1993. Biology, ecology, and social aspects of wild edible mushrooms in the forests of the Pacific Northwest: a preface to managing commercial harvest. ген. Rep. PNW-GTR-309. Portland, OR: U.S.D.A Forest Service, Pacific Northwest Research Station. 42 p.

Molina, R, M. Castellano, T. ODell, J. Smith, D. Pilz, T. Dreisbach, and S. Dunham. 2001. Conservation and management of forest fungi in the Pacific Northwestern United States: an integrated ecosystem approach. In Fungal conservation: Issues and solutions. Edited by D. Moore, M.M. Nauta, and M. Rotheroe. Cambridge University Press, Кембриџ, ОК. Во печат.

O&rsquoDell, T.E., D.L .Luoma, and R.J. Molina. 1992. Ectomycorrhizal fungal communities in young, managed and old growth Douglas-fir stands. Northwest Environmental Journal. 8:166-168.

O&rsquoDell, T.E., M.A. Castellano, and J.M. Trappe. 1993. Biology and application of ectomycorrhizal fungi. Пп. 379-416 in Metting F.B., ed. Soil microbial ecology: applications in agricultural and environmental management. New York: Marcel Dekker.

O&rsquoDell, T.E., J.E. Smith, M. Castellano, and D. Luoma. 1996. Diversity and conservation of forest fungi. Pp 5-18 in D. Pilz and R. Molina, eds. Managing forest ecosystems to conserve fungus diversity and sustain wild mushroom harvests. ген. Rep. PNW-GTR-371. Portland, OR: USDA Forest Service, Pacific Northwest Research Station. 104 p.

Ohlson, M., L. Söderström, G. Hörnberg, O. Zackrisson, and J. Hermansson. 1997. Habitat qualities versus long-term continuity as determinants of biodiversity in boreal old-growth swamp forests. Biological Conservation 81:221-231.

Pilz, D. P., and D. A. Perry. 1984. Impact of clearcutting and slash burning on ectomycorrhizal associations of Douglas-fir seedlings. Canadian Journal of Forest Research 14:94-100.

Pilz, D., F.D. Brodie, S. Alexander and R. Molina. 1998. Relative value of chanterelles and timber as commercial forest products. AMBIO Special Report No. 9:14-16.

Rydin, H, M. Kiekmann, and T. Hallingbäck. 1997. Biological characteristics, habitat associations, and distribution of macrofungi in Sweden. Conservation Biology 11:628-640.

Schlosser, W.E. and K.A. Blatner. 1995. The wild edible mushroom industry of Washington, Oregon and Idaho: a 1992 survey. Весник за шумарство. 93:31-36.

Smith, J.E., R. Molina, M.M.P. Huso, and M.J. Larsen. 2000. Occurrence of Piloderma fallax in young, rotation-age, and old-growth stands of Douglas-fir (Pseudotsuga menziesii) in the Cascade Range of Oregon, U.S.A. Can. J. Bot. 78:995-1001

Smith, M. L., J. N Bruhn,. and J. B Anderson. 1992. The fungus Armillaria bulbosa is among the largest and oldest organisms. Nature 356:428-431.

Smith, S.E. и Д.Ј. Read. 1997. Mycorrhizal Symbiosis, 2nd ed., Academic Press, San Diego.

Spies, T.A. and S.P Cline. 1988. Coarse woody debris in forests and plantations of coastal Oregon. In: From the forest to the sea: a story of fallen trees. C. Mater, R.F. tarrant, J.M. Trappe and J.F. Franklin, Eds. USDA For. Serv. ген. Rep. O PNW-GTR-229. pp 5-24.

Stendell, E. R., T. R. Horton and T. D. Bruns. 1999. Early effects of prescribed fire on the structure of the ectomycorrhizal fungus community in a Sierra Nevada ponderosa pine forest. Mycological Research 103:1353-1359.

Swift, M. J. 1982. Basidiomycetes as components of forest ecosystems. Пп. 307-338 in J. C. Frankland, J. N. Hedger, and M. J. Swift (editors). Decomposer basidiomycetes: their biology and ecology. Прес на Универзитетот Кембриџ. Cambridge, England.

Tyler, G. 1992. Tree species affinity of decomposer and ectomycorrhizal macrofungi in beech (Fagus sylvatica L.), oak (Quercus robur L.) and hornbeam (Carpinus betulus L.) forests. Forest Ecology and Management 47:269-284.

van der Heijden, M. G. A., J. N. Klironomos, M. Ursic, P. Moutoglis, R. Streitwold-Engel, T. Boller, A. Wiemken, and I. R. Sanders. 1998. Mycorrhizal fungal diversity determines plant biodiversity, ecosystem variability and productivity. Nature 396:69-72.

Visser, S. 1995. Ectomycorrhizal fungal succession in jack pine stands following wildfire. New Phytologist 129:389-401.

Wästerlund, I. and T. Ingelög. 1981. Fruit body production of larger fungi in some young Swedish forests with special reference to logging waste. Forest Ecology and Management 3:269-294.



Коментари:

  1. Stirling

    It is the very valuable answer

  2. Goltisar

    Bravo, remarkable phrase and is duly

  3. Ranit

    Let's talk, to me is what to tell on this question.



Напишете порака